Preview

Шәкәрім Университетінің Хабаршысы. Техникалық ғылымдар сериясы

Кеңейтілген іздеу

ЛЕДЕБУРОВ БАДАМЫ (AMYGDALUS LEDEBOURIANA SCHLECHT.) ЭКСПЛАНТТАРЫНЫҢ IN VITRO ДАҚЫЛЫНДАҒЫ ӨМІРШЕҢДІГІНЕ ҚОРЕКТІК ОРТА ҚҰРАМЫНЫҢ ӘСЕРІ

Толық мәтін:

Аннотация

Мақалада Қазақстанның шығыс бөлігінің жергілікті түрі – Ледебуров бадамының микроклонды көбеюі үшін қоректік ортаны таңдап алу нәтижелері келтірілген. Іn vitro дақылындағы Ледебуров бадамы экспланттарының өміршеңдігіне және өсім ерекшеліктеріне гормонсыз және фитогормондармен (6-бензиламинопурин, кинетин, тидиазурон) толықтырылған Мурасиге және Скуг, Гамборг және Эвелег, және Woody Plant Medium қоректік орталарының әсері зерттелді. Қоректік ортаның құрамы in vitro дақылындағы Ледебуров бадамының өркендерінің ұласып өсуіне және өсім ерекшеліктеріне (р<0,05) әсер ететіндігі айқындалды. MS қоректік ортасы Ледебуров бадамын in vitro дақылына енгізу үшін құрамы бойынша ең жақсы қоректік орта болды. Қоректік ортаның құрамына 1,0 мг/л қоюлықпен 6-БАП өсімдіктердің өсімін ынталандырғышты енгізу есебінен өркендердің ұласып өсуі және өсім көрсеткіштерінің жоғарылауына қол жеткізілді.

Авторлар туралы

М. В. Серафимович
Казахский научно-исследовательский институт лесного хозяйства и агролесомелиорации
Қазақстан


В. Ю. Кириллов
Казахский научно-исследовательский институт лесного хозяйства и агролесомелиорации
Қазақстан


Т. Н. Стихарева
Казахский научно-исследовательский институт лесного хозяйства и агролесомелиорации
Қазақстан


Әдебиет тізімі

1. Программа развития города Астаны на 2016-2020 годы. Утверждена к решению маслихата города Астаны от 11.05.2015 года №427/61-V (http://astana.gov.kz/ru/modules/material/2260).

2. Красная книга Казахстана. – Изд. 2-е, переработанное и дополненное. Том 2.: Растения (колл.авт.). – Астана: ТОО «АртPrint XXI», 2014. – 452 с.

3. Калинин Ф.Л., Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. Киев: Наукова думка, 1992. – 232 с.

4. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. – М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. – 160 с.

5. Smith R. Plant Tissue Culture. 3rd Edition. Techniques and Experiments. – Academic Press, 2012. – pp. 208.

6. Jan M. Bonga, Don Durzan (Eds.) Cell and Tissue Culture in Forestry. Specific Principles and Methods: Growth and Developments. – Springer Netherlands, 1987. – Vol. 2. – pp. 448.

7. Rugini E., Verma D.C. Micropropagation of a difficult-to-propagate almond (Prunus amygdalus Batsch) cultivar. Plant Science Letters. 1983. – 28. – P. 273-281.

8. Rugini E. Progress in studies on in vitro culture of almonds. In: Plant Tissue Culture and Its Agricultural Applications, 41st Conference in the Easter School Series in Agriciltural Science, England, 1984.

9. Gürel S., Gülsen Y. The effects of different sucrose, agar and pH levels on in vitro shoot production of almond (Amygdalus communis L.). Turkish Journal of Botany, 1998. – 22. – P. 363-373.

10. Cimò G., Marchese A., Germanà M.A. Microspore embryogenesis induced through in vitro anther culture of almond (Prunus dulcis Mill.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2017. – 128(1). – P. 85-95.

11. Işıkalan Ç., Akbaş F.A., Namlı S., Tilkat E., Başaran D. In vitro micropropagation of almond (Amygdalus communis L. cv. Nonpareil). African Journal of Biotechnology. 2008. – 7(12). – P. 1875-1880.

12. Isıkalan Ç., Akbas F., Namlı S., Basaran D. Adventitious shoot development from leaf and stem explants of Amygdalus communis L. cv. Yaltinski. Plant Omics Journal. 2010. – 3(3). – P. 92-96.

13. Unek C., Tanriver E., Küden A.B. In vitro rooting of a wild type almond (Amygdalus turcomenica Lincz.). XXVIII International Horticultural Congress on Science and Horticulture for People (IHC2010): International Symposium on micro and macro technologies for plant propagation and breeding in horticulture. 2011. – 923. – P. 135-138.

14. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant., 1962. – Vol.15. – №4. – P. 473-497.

15. Gamborg O.L., Eveleigh D.E. Culture methods and detection of glucanases in cultures of wheat and barley // Can. J. Biochem., 1968. – Vol.46. – №5. – Р. 417-421.

16. Lloyd G., McCown B.H. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, (Kalmia latifolia) by use of shoot tip culture // Int. Plant Prop. Soc., Comb. Proc., 1980. – Vol.30. – Р. 421-427.

17. Smith M.A.L., McCown B.H. A comparison of source tissue for protoplast isolation from three woody plant species // Plant Science Letters, 1983. – Vol.28. – P. 149-156.


Рецензия

Дәйектеу үшін:


Серафимович М.В., Кириллов В.Ю., Стихарева Т.Н. ЛЕДЕБУРОВ БАДАМЫ (AMYGDALUS LEDEBOURIANA SCHLECHT.) ЭКСПЛАНТТАРЫНЫҢ IN VITRO ДАҚЫЛЫНДАҒЫ ӨМІРШЕҢДІГІНЕ ҚОРЕКТІК ОРТА ҚҰРАМЫНЫҢ ӘСЕРІ. Шәкәрім Университетінің Хабаршысы. Техникалық ғылымдар сериясы. 2020;(3(91)):289-293.

For citation:


Serafimovich M., Kirillov V., Stikhareva T. THE INFLUENCE OF THE CULTURE MEDIUM COMPOSITION ON THE ESTABLISHMENT OF EXPLANTS OF THE ALMOND LEDEBUROVSKY (AMYGDALUS LEDEBOURIANA SCHLECHT.) IN VITRO. Bulletin of Shakarim University. Technical Sciences. 2020;(3(91)):289-293. (In Russ.)

Қараулар: 245


ISSN 2788-7995 (Print)
ISSN 3006-0524 (Online)
X