Preview

Вестник Университета Шакарима. Серия технические науки

Расширенный поиск

ВЛИЯНИЕ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ НА ПРИЖИВАЕМОСТЬ ЭКСПЛАНТОВ МИНДАЛЯ ЛЕДЕБУРОВСКОГО (AMYGDALUS LEDEBOURIANA SCHLECHT.) В КУЛЬТУРЕ IN VITRO

Аннотация

В статье представлены результаты подбора питательной среды для микроклонального размножения миндаля Ледебуровского – эндемика восточной части Казахстана. Исследовано влияние безгормональных и дополненных фитогормонами (6-бензиламинопурин, кинетин, тидиазурон) питательных сред Мурасиге и Скуга, Гамборга и Эвелега, и Woody Plant Medium на приживаемость и ростовые особенности эксплантов миндаля Ледебуровского в культуре in vitro. Установлено, что состав питательной среды влияет на приживаемость и ростовые особенности (р<0,05) побегов миндаля Ледебуровского в культуре in vitro. Лучшей по составу питательной средой для введения в культуру in vitro миндаля Ледебуровского являлась питательная среда MS. Увеличение приживаемости и ростовых показателей побегов достигалось за счет введения в состав питательной среды регулятора роста растений 6-БАП в концентрации 1,0 мг/л.

Об авторах

М. В. Серафимович
Казахский научно-исследовательский институт лесного хозяйства и агролесомелиорации
Казахстан

снс отдела селекции

г. Щучинск



В. Ю. Кириллов
Казахский научно-исследовательский институт лесного хозяйства и агролесомелиорации
Казахстан

к.х.н., асс. профессор, зам. генерального директора по науке

г. Щучинск



Т. Н. Стихарева
Казахский научно-исследовательский институт лесного хозяйства и агролесомелиорации
Казахстан

к.б.н., главный ученый секретарь

г. Щучинск



Список литературы

1. Программа развития города Астаны на 2016-2020 годы. Утверждена к решению маслихата города Астаны от 11.05.2015 года №427/61-V (http://astana.gov.kz/ru/modules/material/2260).

2. Красная книга Казахстана. – Изд. 2-е, переработанное и дополненное. Том 2.: Растения (колл.авт.). – Астана: ТОО «АртPrint XXI», 2014. – 452 с.

3. Калинин Ф.Л., Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. Киев: Наукова думка, 1992. – 232 с.

4. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. – М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. – 160 с.

5. Smith R. Plant Tissue Culture. 3rd Edition. Techniques and Experiments. – Academic Press, 2012. – pp. 208.

6. Jan M. Bonga, Don Durzan (Eds.) Cell and Tissue Culture in Forestry. Specific Principles and Methods: Growth and Developments. – Springer Netherlands, 1987. – Vol. 2. – pp. 448.

7. Rugini E., Verma D.C. Micropropagation of a difficult-to-propagate almond (Prunus amygdalus Batsch) cultivar. Plant Science Letters. 1983. – 28. – P. 273-281.

8. Rugini E. Progress in studies on in vitro culture of almonds. In: Plant Tissue Culture and Its Agricultural Applications, 41st Conference in the Easter School Series in Agriciltural Science, England, 1984.

9. Gürel S., Gülsen Y. The effects of different sucrose, agar and pH levels on in vitro shoot production of almond (Amygdalus communis L.). Turkish Journal of Botany, 1998. – 22. – P. 363-373.

10. Cimò G., Marchese A., Germanà M.A. Microspore embryogenesis induced through in vitro anther culture of almond (Prunus dulcis Mill.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2017. – 128(1). – P. 85-95.

11. Işıkalan Ç., Akbaş F.A., Namlı S., Tilkat E., Başaran D. In vitro micropropagation of almond (Amygdalus communis L. cv. Nonpareil). African Journal of Biotechnology. 2008. – 7(12). – P. 1875-1880.

12. Isıkalan Ç., Akbas F., Namlı S., Basaran D. Adventitious shoot development from leaf and stem explants of Amygdalus communis L. cv. Yaltinski. Plant Omics Journal. 2010. – 3(3). – P. 92-96.

13. Unek C., Tanriver E., Küden A.B. In vitro rooting of a wild type almond (Amygdalus turcomenica Lincz.). XXVIII International Horticultural Congress on Science and Horticulture for People (IHC2010): International Symposium on micro and macro technologies for plant propagation and breeding in horticulture. 2011. – 923. – P. 135-138.

14. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant., 1962. – Vol.15. – №4. – P. 473-497.

15. Gamborg O.L., Eveleigh D.E. Culture methods and detection of glucanases in cultures of wheat and barley // Can. J. Biochem., 1968. – Vol.46. – №5. – Р. 417-421.

16. Lloyd G., McCown B.H. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, (Kalmia latifolia) by use of shoot tip culture // Int. Plant Prop. Soc., Comb. Proc., 1980. – Vol.30. – Р. 421-427.

17. Smith M.A.L., McCown B.H. A comparison of source tissue for protoplast isolation from three woody plant species // Plant Science Letters, 1983. – Vol.28. – P. 149-156.


Рецензия

Для цитирования:


Серафимович М.В., Кириллов В.Ю., Стихарева Т.Н. ВЛИЯНИЕ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ НА ПРИЖИВАЕМОСТЬ ЭКСПЛАНТОВ МИНДАЛЯ ЛЕДЕБУРОВСКОГО (AMYGDALUS LEDEBOURIANA SCHLECHT.) В КУЛЬТУРЕ IN VITRO. Вестник Университета Шакарима. Серия технические науки. 2020;(3(91)):289-293.

For citation:


Serafimovich M., Kirillov V., Stikhareva T. THE INFLUENCE OF THE CULTURE MEDIUM COMPOSITION ON THE ESTABLISHMENT OF EXPLANTS OF THE ALMOND LEDEBUROVSKY (AMYGDALUS LEDEBOURIANA SCHLECHT.) IN VITRO. Bulletin of Shakarim University. Technical Sciences. 2020;(3(91)):289-293. (In Russ.)

Просмотров: 239


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2788-7995 (Print)
ISSN 3006-0524 (Online)
X